Видовий склад та структура комплексу фітонематод сої в умовах Правобережного Лісостепу України

Валерій Пашковський, Олександр Бабич
Анотація

Метою дослідження було встановлення видового складу, таксономічної та екологічної структури комплексу фітонематод сої в умовах Правобережного Лісостепу України. У роботі застосовано польові маршрутні обстеження, лабораторні методи екстракції нематод із ґрунту та кореневої системи (лійковий метод Берманна та ситової сепарації), морфологічну і морфометричну ідентифікацію з використанням світлової мікроскопії, а також методи структурно-екологічного аналізу угруповань і варіаційної статистики. Встановлено, що комплекс нематод ризосфери сої включає 26 видів, які належать до 17 родів, 10 родин, п’яти рядів та двох класів, що засвідчило про високу таксономічну різноманітність ґрунтової біоти в агроценозі. Домінуючим був клас Chromadorea (понад 80 % від загальної структури), що вказує на функціональну спрямованість угруповання в умовах інтенсивного агровикористання. Найбільш чисельним був ряд Tylenchida, який визначає основну частку фітопаразитичного блоку та включає економічно значущі види Pratylenchus penetrans, Tylenchorhynchus dubius, Helicotylenchus dihystera та Paratylenchus nanus. Їх домінування засвідчило формування стабільного інвазійного потенціалу у ризосфері сої та наявність критичного фітосанітарного навантаження. Водночас суттєва частка сапробіонтних і бактеріотрофних нематод (Rhabditida та Cephalobidae) вказала на інтенсивні процеси мінералізації органічної речовини та активне функціонування мікробного блоку ґрунту. Поєднання високої частки фітопаразитичних і редуцентних форм формує функціонально неодноріду структуру угруповання, що відображає одночасні процеси екологічного напруження та біологічної компенсації в агроекосистемі. Структурний аналіз показав проміжний рівень екологічної стабільності системи, характерний для інтенсивно використовуваних сільськогосподарських угідь із періодичним порушенням ґрунтової структури та звуженням трофічних зв’язків. Отримані результати можуть бути використані для біоіндикаційної оцінки стану ґрунтів та розробки екологічно орієнтованих систем моніторингу і захисту посівів сої від фітонематод

Ключові слова

видовий склад; таксономічна структура; агроценози; Pratylenchus penetrans; Tylenchorhynchus dubius; біоіндикація ґрунтів

ЦИТУВАТИ
Pashkovsky, V., & Babych, O. (2026). Species composition and structure of the phytoneamatode complex of soybean in the Right-Bank Forest-Steppe of Ukraine. Biological Systems: Theory and Innovation, 17(2), 125-139. https://doi.org/10.31548/biologiya/2.2026.125
Використані джерела
  1. Abdel-Baset, S.H., Abo-Rehab, M.E.A., & Mohamed, S.M.A. (2025). Pathogenicity and management of root-knot nematode, Meloidogyne javanica infecting soybean plants at different inoculum levels. Pakistan Journal of Nematology, 43(1), 23-31. doi: 10.17582/journal.pjn/2025/43.1.23.31.
  2. Adamu, F.A., Hundessa, W.B., Yimer, S.G., Aseffa, A.W., & Meressa, B.H. (2024). Plant parasitic nematodes on soybean (Glycine max (L.) Merr.) in the Metekel zone (Ethiopia) and varietal resistance evaluation to Meloidogyne javanica. Journal of Phytopathology, 172(2), article number e13287. doi: 10.1111/jph.13287.
  3. Allen, T.W., et al. (2017). Soybean yield loss estimates due to diseases. Plant Health Progress, 18(1), 19-27. doi: 10.1094/PHP-RS-16-0066.
  4. Babych, A., Babych, O., Havryliuk, O., Statkevych, O., Dziuman, Y., Litvinov, D., Zavgorodniy, V., Kaduk, V., & Prichodko, D. (2024). Managing populations of cyst-forming nematodes in agroecosystems of field crops. Biosystems Diversity, 32(2), 203-209. doi: 10.15421/012421.
  5. Bongers, T., & Ferris, H. (1999). Nematode bioindicators. Trends in Ecology & Evolution, 14, 224-228. doi: 10.1016/S0169-5347(98)01583-3.
  6. Convention on Biological Diversity. (2010, October). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/995_030#Text.
  7. Ferris, H. (2010). Nematode metabolic footprints. European Journal of Soil Biology, 46, 97-104. doi: 10.1016/j.ejsobi.2010.01.003.
  8. Furmanczyk, E.M., et al. (2025). An analysis of soil nematode communities across diverse horticultural cropping systems. Soil Systems, 9(3), article number 77. doi: 10.3390/soilsystems9030077.
  9. Garland, J.L., Mackowiak, C.L., & Zabaloy, M.C. (2010). Organic waste amendment effects on soil microbial activity in a corn-rye rotation: Application of a new approach to community-level physiological profiling. Applied Soil Ecology, 44(3), 262-269. doi: 10.1016/j.apsoil.2010.01.003.
  10. Hooper, D.J., Hallmann, J., & Subbotin, S.A. (2005). Methods for extraction, processing and detection of plant and soil nematodes. In M. Luc, R.A. Sikora & J. Bridge (Eds.), Plant parasitic nematodes in subtropical and tropical agriculture (pp. 53-86). Wallingford: CABI Publishing. doi: 10.1079/9780851997278.0053.
  11. Jones, J.T., et al. (2013). Top 10 plant-parasitic nematodes. Molecular Plant Pathology, 14, 946-961. doi: 10.1111/mpp.12057.
  12. Kim, J., Sung, Y.W., Yang, J.-W., Nam, K.J., Lee, K.-L., Shim, D., & Kim, Y.-H. (2024). Genetic variations underlying root-knot nematode resistance in sweetpotato. Gene, 931, article number 148895. doi: 10.1016/j.gene.2024.148895.
  13. Koenning, S.R., & Wrather, J.A. (2010) Suppression of soybean yield potential in the continental united states by plant diseases from 2006 to 2009. Plant Health Progress, 11, 5-11. doi: 10.1094/PHP-2010-1122-01-RS.
  14. Kosovska, N., Makarenko, N., Bondar, V., Matviikiv, A., & Symochko, L. (2022). Soil microbiome under the influence of nano- and biopreparations. International Journal of Ecosystems and Ecology Science, 12(3). doi: 10.31407/ijees12.301.
  15. Lazarova, S., Coyne, D., Rodríguez, M.G., Peteira, B., & Ciancio, A. (2021). Functional diversity of soil nematodes in relation to the impact of agriculture – a review. Diversity, 13(2), article number 64. doi: 10.3390/d13020064.
  16. Mai, W.F. (2018). Plant-parasitic nematodes: A pictorial key to genera. Ithaca, NY: Cornell University Press.
  17. Pulavarty, A., Egan, A., Karpinska, A., Horgan, K., & Kakouli-Duarte, T. (2021). Plant parasitic nematodes: A review on their behaviour, host interaction, management approaches and their occurrence in two sites in the republic of Ireland. Plants, 10(11), article number 2352. doi: 10.3390/plants10112352.
  18. Seinhorst, J.W. (1959). A rapid method for the transfer of nematodes from fixative to anhydrous glycerin. Nematologica, 4, 67-69. doi: 10.1163/187529259X00381.
  19. Shrestha, U., Dee, M.E., Piya, S., Ownley, B.H., & Butler, D.M. (2020). Soil inoculation with Trichoderma asperellum, T. harzianum or Streptomyces griseoviridis prior to anaerobic soil disinfestation (ASD) does not increase ASD efficacy against Sclerotium rolfsii germination. Applied Soil Ecology, 147, article number 103383. doi: 10.1016/j.apsoil.2019.103383.
  20. Stefanovska, T., Skwiercz, A.T., Zhukov, O., & Husieva, A. (2025). Effects of acetamiprid and flupyradifurone-based insecticides on soil fauna: Research on nematodes and earthworms. Journal of Horticultural Research, 33(1), 121-126. doi: 10.2478/johr-2025-0012.
  21. Tylka, G.L., & Marett, C.C. (2014). Distribution of the soybean cyst nematode, Heterodera glycines, in the United States and Canada: 1954 to 2014. Plant Health Progress, 15(2), 85-87. doi: 10.1094/PHP-BR-14-0006.
  22. Wang, H.-W., Zhu, Y.-X., Xu, M., Cai, X.-Y., & Tian, F. (2022). Co-application of spent mushroom substrate and PGPR alleviates tomato continuous cropping obstacle by regulating soil microbial properties. Rhizosphere, 23, article number 100563. doi: 10.1016/j.rhisph.2022.100563.
  23. Yeates, G.W., Bongers, T., De Goede, R.G., Freckman, D.W., & Georgieva, S.S. (1993). Feeding habits in soil nematode families and genera – an outline for soil ecologists. Journal of Nematology, 25(3), 315-331.